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硝普钠对NaCl胁迫下黄瓜幼苗的影响园艺毕业论文.doc

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'河南科技大学毕业设计(论文)硝普钠对NaCl胁迫下黄瓜幼苗的影响姓名万晶琼院(系)林学院专业园艺指导教师蒋燕2014年5月15日19 硝普钠对NaCl胁迫下黄瓜的影响摘要一氧化氮(nitricoxide,NO)是生物体内的重要活性分子,在植物体内NO是一种广泛存在的信号分子,参与植物生长发育的许多重要的生理过程。本研究通过对根际施加外源NO供体硝普钠(sodiumnitroprusside,SNP),初步探讨了盐胁迫下NO处理对黄瓜幼苗生理生化的影响,为提高植物的抗盐性提供一定的理论依据。在4g/Kg的NaCl的胁迫下,采用基质栽培研究SNP对黄瓜幼苗生长的影响,结果表明,盐胁迫抑制黄瓜的生长,而NO处理减弱了这种抑制作用,降低了盐胁迫下黄瓜叶片中可溶性蛋白质的含量,提高了抗氧化酶GPX,CAT的活性,说明低浓度NO提高了黄瓜叶片的抗氧化能力,减轻了盐胁迫诱导的膜质过氧化损伤,NO可能参与了植物的代谢或生理活动。盐胁迫显著降低了叶片叶绿素含量,显著增加了可溶性糖含量,低浓度的NO处理增加叶片叶绿素含量,降低了可溶性糖含量,说明NO有利于黄瓜非光能的捕获和转化,明显促进植物的生长,降低盐胁迫对黄瓜的抑制作用。另外,低浓度的SNP可以缓解盐胁迫对黄瓜幼苗的形态指标如株高,茎粗,叶长叶宽的抑制作用。关键词:黄瓜,一氧化氮,低浓度,盐胁迫,SNPEFFECTSOFSODIUMSNPONSEEDINGSOFCUCUMBERUNDERNaClSTRESS19 ABSTRACTNitricoxide(NO)isanimportantactivemoleculeinbiology.ItisnowbeingevidentthatNOisalsoaubiquitoussignalmoleculeinplantkingdom.Itwasprovedtoparticipateinmanykeyphysiologicalprocesses.Therefore,theeffectsofNOdonoronthephysiologicalandbiochemicalmechanismsinhydroponiccucumberseedlingsundersaltstresswereinvestigated,inordertoclarifythepossiblemechanismsofenhancingsalt-toleranceinplants.Underthestressof4g/KgNaCl,theimpactofSNPonthegrowthofcucumberseedlingswerestudiedbysubstrateculture.Theresultsshowedthatsaltstresscanrestrainthegrowthofthecucumberundersalinitystress,andreducethecontentofsolubleproteinincucumberleavesundersaltstress,improvetheantioxidantenzymesGPX,theactivityofCAT.ItcouldbeconcludedthatlowconcentrationNOimprovestheoxidationresistanceofcucumberleaf,reducedthemembranousperoxidationdamageinducedbysaltstress,NOmaybeinvolvedinthemetabolism,orphysiologicalactivityofplants.Saltstresssignificantlydecreasedleafchlorophyllcontent,significantlyincreasedthesolublesugarcontent,lowconcentrationofNOtreatmentincreaseleafchlorophyllcontent,reducedthecontentofsoluble,showsNObenefitcucumberthecaptureandconversionoflightenergy,andobviouslypromotethe19 growthofplants,reducetheinhibitoryeffectofsaltstressoncucumber.Inaddition,thelowconcentrationofSNPcanalleviatesaltstressoncucumberseedlingmorphologicalindicatorssuchasplantheight,stemdiameter,leaflengthwidthofinhibition.KEYWORDS:cucumber;nitricoxide;lowconcentration;saltstress;SNP19 目录摘要Abstract1前言11.1盐分胁迫及SNP作用机理概述11.2盐胁迫对植物生长发育及代谢的影响21.2.1盐对种子萌发的影响21.2.2盐对植物生长发育的影响21.2.3盐对植物光合作用的影响31.3提高作物耐盐性的途径31.3.1培育耐盐品种31.3.2利用钙和微量元素31.3.3抗盐锻炼41.3.4植物激素调控41.4本研究的目的和意义42材料和方法52.1供试材料及实验方法52.2生理指标测定52.2.1叶绿素含量的测定52.2.2可溶性糖含量的测定62.2.3可溶性蛋白质含量的测定62.2.4过氧化氢酶活性的测定72.2.5过氧化物酶活性的测定72.3形态指标的测定82.4数据处理83结果与分析83.1SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶绿素含量的影响83.2SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗可溶性糖含量的影响93.5SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗过氧化氢酶活性的影响123.6SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗形态指标的影响1319 3.6.1SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗株高的影响133.6.2SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗茎粗的影响133.6.3SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶片数的影响143.6.4SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶长叶宽的影响144结论与讨论154.1结论154.2讨论154.2.1SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗的光合作用的影响154.2.2SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗的可溶性糖和可溶性蛋白质含量的影响。164.2.3SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗的过氧化物酶,过氧化氢酶活性的影响17参考文献18致谢2119 河南科技大学毕业设计(论文)1前言土壤的盐渍化现象是现代农业所面临的主要问题之一,盐分胁迫通常影响这植物的产量,蛋白质的合成和光合作用以及其他多种代谢反应的进行[1]。据统计全球约20%的耕地和半数可灌溉土地受到盐渍化影响,目前我国约有600多万公顷的次生盐渍化土壤,约占百分之十的耕地面积,而且在以较快的速度在不断扩大和加剧[2]。设施栽培土壤地的次生盐渍化问题日益突出,我国人均资源无论是土地或是水都低于世界平均水平,在人口,粮食和耕地都日益紧张的今天,合理开发和利用盐渍土壤资源成为重要的课题。盐渍化是引起植物渗透胁迫及影响植物正常生长的主要原因之一,高盐造成植物叶片气孔关闭,降低植物光合作用效率。大部分植物在土壤盐含量为0.3%时受到危害,大于0.5%时可能停止生长,因此提高蔬菜作物对盐碱的耐性是农业生产中的一项长期目标[3]。1.1盐分胁迫及SNP作用机理概述土壤中盐分过多对植物生长发育产生的危害叫盐害。耐盐性是指植在盐胁迫下维持生长和形成经济产量或是完成其生活史的能力,是多基因控制的复合遗传性状[4]。这种能力有着明显的种间和种内差异,植物在盐渍环境中生长无法阻止盐分进入或排除盐分,只能通过不同的生理途径适应或部分适应使之不受伤害,维持正常生理活动[5]。钠盐是造成盐分过高的主要盐类。根据植物耐盐能力的不同,可将植物大体上分为盐生植物和淡土植物或非盐植物。绝大多数农作物属于淡植物,它们常常通过降低对盐分的吸收和运输来缓解盐胁迫。盐生植物与淡土植物之间并没有绝对的界限,往往相互交叠,而且不同植物种类和个体在不同发育阶段对盐分的反应程度不同[6]。NO曾被美国science杂志评为1992年度的“明星分子”,而有关NO在植物中的作用,20世纪就是年代才开始引起科学家的关注。近年来,对NO植物学的研究表明,19 河南科技大学毕业设计(论文)NO是具有生物活性和信号转导作用的气体活性分子,它不仅对植物的许多生命活动如种子萌发,叶片伸展,生长发育和衰老等具有直接的生理调节功能,而且作为防御反应中的关键信使,参与了植物对生物和非生物胁迫的响应[7],已经有人把它作为一种新的植物激素,而硝普钠SNP是外源一氧化氮的供体之一。在植物的抗病反应中,一方面,NO直接或间接杀死病菌。另一方面,NO可以诱导植物系统性获得抗性(SAR)的形成。水杨酸SA是植物SAR形成的关键信号分子,NO能够通过依赖于SA信号途径激活或增强植物防卫反应。NO能激活苯丙氨酸解氨酶PAL[8]。PAL则诱导合成更多的SA,SA具有改变不同NO调控酶的能力,其中包括有顺乌头酸梅,过氧化氢酶和其他几种血红蛋白(Stamler,1994)。1.2盐胁迫对植物生长发育及代谢的影响1.2.1盐对种子萌发的影响种子能否在盐胁迫下萌发形成苗,是植物在盐碱条件下生长发育的前提,因此在盐胁迫下研究种子的萌发具有重要的意义。盐浓度影响种子的萌发主要有三方面的效应,即增益效应,负效效应和完全抑制效应。低浓度盐分对种子的萌发具有促进作用,随着盐分的升高,种子的发芽率,发芽指数和活力指数均降低,盐浓度过高会抑制种子的萌发。浓度为0.4%以下的盐胁迫能促进荆条白蜡和沙枣种子的萌发[8]。随着浓度的增加种子萌发受到不良影响,光照对植物种子的萌发有明显的促进作用。夏至草种子的发芽率,发芽势,发芽指数,胚根胚轴生长也均随盐浓度的升高呈下降趋势[9],对无芒雀麦的研究也得出同样的结论[10]。1.2.2盐对植物生长发育的影响当植物的根系受到盐胁迫的效应时,会产生相应的生理反应,继而影响地上部分的生长,盐胁迫常导致植物根系生长受到抑制[11]。短期盐胁迫下,植物根系总吸收面积受到一定的限制,质膜的透性升高并伴随吸水能力下降,19 河南科技大学毕业设计(论文)随着盐胁迫时间的延长,根系活力和根系吸收面积会受到抑制程度增大,根吸收能力会持续下降,同时蒸腾速率的下降导致蒸腾拉力的下降,水分失衡加剧,叶片相对含水量下降导致光合速率进一步降低,盐胁迫对植株的伤害加重。盐分胁迫明显的抑制了拟南芥根系对大量元素的吸收,进而影响植株总体营养供应。盐胁迫导致黄瓜根系MDA含量和电解质渗透率的增加,导致生物膜的伤害,生长量下降[12]。过量盐分对植物造成渗透胁迫和干扰营养离子平衡,盐分通过抑制和诱导多种酶系统来影响植物的正常生长[13]。生物量是植物对盐胁迫反应的综合体现,也是植物耐盐性的重要指标之一。1.2.3盐对植物光合作用的影响光合作用是植物生长发育的基础,研究盐胁迫如何影响制约光合作用具有重要的意义。盐胁迫显著降低了植物的光合作用。植物光和作用产生的能量一部分用于植物的生长,另一部分用于盐胁迫为了抵抗盐胁迫,植物自身需要加强光合速率,但随着盐浓度及处理时间的延长,这种适应能力下降。叶绿素含量是反映光合强度的重要指标。一般认为盐胁迫引起植物水势及气孔导度降低,限制CO2到达光合机构,从而抑制光合作用[14]。1.3提高作物耐盐性的途径1.3.1培育耐盐品种充分利用作物抗盐基因培育高抗盐品种,是提高作物耐盐性的最根本的方法:(1)通过品种杂交等常规手段选育耐盐品种;(2)对现有植物物种进行耐盐性筛选;(3)利用现代生物技术创新新的耐盐品种。1.3.2利用钙和微量元素盐胁迫会降低植物对钙和微量元素的吸收,试植物产生缺素症。利用一定浓度的钙和微量元素处理作物种子或外施,可有效避免缺素症,提高植物的耐盐性。19 河南科技大学毕业设计(论文)1.3.3抗盐锻炼植物的抗盐性是在个体发育中形成的,因此植物幼龄期可塑性高,适应能力强的特点,用一定浓度盐溶液处理种子,可明显提高抗盐性。1.3.4植物激素调控一些植物激素可以缓解植物盐分胁迫,提高植物耐盐性,促进植物生长。多胺是植物体代谢过程中产生的一类低分子量脂肪族含氮碱,在维持盐胁迫下蛋白质和核酸等大分子的构想和清除活性氧方面具有重要作用[15]。1.4本研究的目的和意义黄瓜属葫芦科植物,广泛分布在中国各地,并且为主要的温室产品之一,可全年供应,是现在人生活中不可或缺的一种蔬菜。由于设施栽培采用特殊的覆盖结构,改变了其内部生态环境及自然状态下的水热平衡,大大地改变了土壤的理化性质,随着覆盖年限的增加,土壤次生盐渍化加重,导致黄瓜的经济价值降低,从而给黄瓜周年生产造成巨大损失[16]。一氧化氮是一种广泛分布于生物体内的气体活分子,作为信号分子,NO在植物抗逆性中的作用越来越受到重视。已证明,NO在植物生长,发育,衰老,细胞程序性死亡,乙烯释放,抗病和对环境胁迫等各种不同形式的响应中有很大的作用。刘开利等研究表明了随着盐胁迫时间的延长,水稻幼苗受抑制的程度增加,表现为生长速率下降,株高降低,单用SNP浸种处理,对水稻幼苗的生长具有明显的促进效果,不同浓度的SNP的缓解盐胁迫对水稻幼苗造成的抑制作用是不同的。因此,本实验拟采用NO供体SNP(0mg/g,2mg/g,4mg/g,6mg/g,8mg/g,10mg/g)处理NaCl胁迫下黄瓜幼苗,探讨缓解NO对缓解NaC胁迫的效果,筛选出适合黄瓜生长的SNP浓度,为进一步阐述NaCl胁迫对植物的伤害以及为我国广大盐碱地区和设施植物栽培中防止盐害提供理论依据。19 河南科技大学毕业设计(论文)2材料和方法2.1供试材料及实验方法本实验所用的材料为黄瓜杂交一代,购买于洛阳市关林农贸市场。穴盘育苗,待幼苗长出三片真叶时进行移栽。移栽至十五厘米口径的塑料盆中,每盆栽三株,基质为草炭,蛭石和珍珠岩(1:1:1)[15]。每公斤添加4gNaCl,再分别添加0,2,4,6,8,10mg/kg的SNP,混合均匀后移栽,不添加任何化学药品的为对照。每组设置六个重复,将苗子置于相同的适宜环境下,每星期浇水两次,一个月后取样测定黄瓜苗的生理指标和形态指标。2.2生理指标测定2.2.1叶绿素含量的测定使用乙醇提取法测定[18]。称取清洗过的黄瓜叶片0.2g,剪碎(去掉中脉)放入研钵,加入5ml96%乙醇,少量石英砂,CaCO3研磨成匀浆,再加入96%乙醇5ml,继续研磨至组织变白,静置3-5分钟,倒入漏斗,过滤到25mi的棕色容量瓶中,用少量乙醇冲洗研钵,研棒数次,最后用乙醇定容到25mi,摇匀。以96%乙醇为空白,用分光光度计在波长665nm和649nm下测定其吸光度,按下列公式计算叶绿素含量:Ca=13.95A665-6.88A649Cb=24.96A649-7.32A665叶绿素含量(mg/g)=cVn/W式中:c为色素的浓度(mg/L);V为提取液体积(L);n为稀释倍数,W为样品鲜重(g)。19 河南科技大学毕业设计(论文)2.2.2可溶性糖含量的测定采用蒽酮法测定[19]。称取叶片0.5g,去掉中脉剪碎混匀,分别放入20ml的试管中,加入10ml的蒸馏水,并用塑料封口膜密封置后,至于沸水中保温30分钟。自然冷却至室温后过滤,提取液过滤入25ml的容量瓶中,用蒸馏水重复提取一次并过滤,最后用蒸馏水定容。吸取样品提取液0.5ml于试管中,加蒸馏水1.5ml,按顺序向试管中依次加入0.5ml的蒽酮乙酸乙酯和5ml的浓硫酸(比重1.84),充分震荡,立即将试管放入沸水中,逐管准确保温一分钟,取出后自然冷却至室温,以空白作对照,用分光光度计测定在630nm处的吸光值,按下列公式计算可溶性糖含量:可溶性糖含量测定(mg/g)=cVn/a/W×10-3式中:c为标准曲线上查得的值(µg);V为提取液总量(ml);a为显色体系中提取液的加入量;n为稀释倍数;W为样品鲜重(g)。2.2.3可溶性蛋白质含量的测定采用考马斯亮蓝法G-250法进行测定。取0.5g叶片于研钵中,用5ml蒸馏水研磨成匀浆后,转移至离心管,冲洗研钵研棒数次,3000r/min离心10min,上清液转移至25ml容量瓶中,用蒸馏水定容至刻度。吸取提取液1ml和5ml考马斯亮蓝G-250溶液,摇匀,放置2min,以空白为对照,在595nm波长下测定吸光值,按下列公式计算蛋白质含量:蛋白质含量(mg/g)=cVT/VS/W×10-3式中:c为标准曲线上查得的值(μg);VT为提取液总量(ml),VS为显色时的提取液加入量(ml),W为样品鲜重(g)。19 河南科技大学毕业设计(论文)2.2.4过氧化氢酶活性的测定取1g的叶片加入PH值为7.8的磷酸缓冲液少量,研磨成匀浆,转移至25ml容量瓶中,再用缓冲液冲洗研钵,冲洗液转移至容量瓶中,最后用缓冲液定容,4000r/min离心15分钟,上清液即为过氧化氢酶的粗提液。取上清液2.5ml于三角瓶中,对照组立即加入2.5ml10%H2SO4,再加入2.5ml的0.1mol/LH2O2,测定组加入上清液2.5ml和2.5ml的0.1mol/LH2O2。同时计时,于30°C恒温水浴中保温10分钟后,向测定组加入10%H2SO42.5ml终止反应。用0.1mol/LKMnO4标准溶液滴定,至出现粉红色且30s内不退色为终点。按下列公式计算过氧化氢酶活性:CAT(H2O2mg/g/min)=1.7V(A-B)/WVtt式中:A为对照滴定所用KMnO4量(ml);B为酶反应后滴定所用KMnO4量(ml);V为提取酶液总量(ml);W为样品鲜重(g);Vt为反应体系加入的酶液量(ml);t为反应时间(min)。2.2.5过氧化物酶活性的测定取2g的叶片加入PH值为5.5的磷酸缓冲液少量,研磨成匀浆,转移至离心管中3000r/min离心10分钟,上清液转移至25ml容量瓶中,再用缓冲液冲洗研钵,冲洗液转移至容量瓶中,最后用缓冲液定容,低温下备用。试管中加入2.9ml50mmol/L磷酸缓冲液,,1ml2%的H2O2,1ml50mmol/L的愈创木酚和0.1ml酶液,置于37℃水浴中保温15分钟,对照组置于沸水中5min,反应结束后立即测470nm波长的吸光度,测定3-5分钟的吸光度变化。按下列公式计算过氧化物酶活性:过氧化物酶活性(µ/g/min)=△A470V/(0.01WVtt)其中:W为材料鲜重(g);V为酶液提取量(ml);Vt19 河南科技大学毕业设计(论文)为反应体系加入的酶液量(ml);t为反应时间(min)。2.3形态指标的测定用尺子测量黄瓜苗的株高(子叶节到生长点之间的距离),叶长,叶宽,用游标卡尺测量茎粗(子叶节下1cm处的粗度)。2.4数据处理对数据进行方差分析,用MicrosftExcel软件作图。3结果与分析3.1SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶绿素含量的影响SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶绿素含量的影响见图1。由图可知,在NaCl胁迫作用下,叶绿素含量与对照(非NaCl胁迫)没有明显的差异。而低浓度范围内的SNP处理,本实验体现在6mg/Kg范围内,可提高幼苗的叶绿素含量,其中6mg/KgSNP处理显著缓解盐胁迫对叶绿素的抑制,作用最大,超高了CK水平。而8mg/KgSNP和10mg/KgSNP处理黄瓜叶片的叶绿素含量出现明显的下降趋势,而这种下降趋势较为缓和,基本趋于0mg/Kg的SNP处理。这说明低浓度的SNP,释放的NO能缓解盐胁迫下黄瓜叶片中叶绿素的降解,而随着浓度的升高,这种作用又呈现下降趋势。19 河南科技大学毕业设计(论文)A:CK(正常生长的植株)B:0mg/KgSNP+4mg/KgNaClC:2mg/KgSNP+4mg/KgNaClD:4mg/KgSNP+4mg/KgNaClE:6mg/KgSNP+4mg/KgNaClF:8mg/KgSNP+4mg/KgNaClG:10mg/KgSNP+4mg/KgNaCl下同3.2SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗可溶性糖含量的影响SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗可溶性糖含量的影响见图2。由图可知,4mg/kgNaCl的胁迫下,黄瓜幼苗的可溶性糖含量显著增加,但和CK相比,没有达到显著水平。SNP处理会降低NaCl胁迫对黄瓜苗的可溶性糖含量的促进作用,且随着浓度的升高,这种促进作用显著性增加。从数值上考虑,随着SNP浓度的升高黄瓜幼叶中可溶性糖含量呈下降趋势,当浓度达到一定范围后,这种促进作用有所降低,本实验中,2mg/KgSNP,4mg/KgSNP,6mg/KgSNP处理表现为下降趋势较急促,而浓度8mg/KgSNP,10mg/KgSNP处理促进作用变化较小,基本不再变化。19 河南科技大学毕业设计(论文)3.3SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗可溶性蛋白质含量的影响SNP对NaCl胁迫下黄瓜胁迫下可溶性蛋白质含量的影响见图3。有图可知,在4g/mgNaCl的作用下,黄瓜幼苗的可溶性蛋白质含量明显升高,达到显著水平,而低浓度的SNP处理减弱了盐胁迫对可溶性蛋白质的促进作用。2mg/KgSNP,4mg/KgSNP和6mg/KgSNP处理明显减低了盐胁迫下的蛋白质含量,8mg/KgSNP处理与CK处理下的黄瓜幼苗的可溶性蛋白质含量相比已经没有明显的差异,而10mg/KgSNP处理使得黄瓜叶片可溶性蛋白质的含量明显降低了,已经与没有SNP处理的叶片可溶性蛋白质含量接近,10mg/KgSNP处理明显的抑制了盐胁迫对蛋白质含量的促进作用。19 河南科技大学毕业设计(论文)3.4SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗过氧化物酶活性的影响SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗过氧化物酶活性的影响见图4,由图可知,与CK相比,盐胁迫显著降低了黄瓜叶片中过氧化物酶活性,SNP处理后各组过氧化物酶活性都有所升高,低浓度的SNP处理,即2mg/KgSNP,4mg/KgSNP处理会使酶活性显著增加,但随着浓度的增加,达到6mg/Kg的SNP处理后,黄瓜幼苗叶片中的过氧化物酶的活性又有所降低,8mg/KgSNP处理酶活性进一步降低,而到10mg/KgSNP处理后,酶活性已经基本降低到没有SNP处理的水平上了,其中4mg/Kg的SNP处理GPX活性增加较明显,达到显著水平。3.5SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗过氧化氢酶活性的影响SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗过氧化氢酶活性的影响见图5.由图可知,与对照相比4mg/Kg的NaCl处理显著降低了黄瓜幼苗叶片中过氧化氢酶的活性,施加SNP后,各组CAT活性均增加。从数据上分析,低浓度的SNP处理CAT活性持续增加,但这种促进作用始终低于CK水平。当浓度达到一定数值后,本实验的处理水平是8mg/KgSNP处理和mg/KgSNP处理,酶活性开始降低,但还是高于无SNP处理的盐胁迫的黄瓜幼苗的过氧化氢的活性,6mg/Kg的SNP处理对CAT活性增加最显著。19 河南科技大学毕业设计(论文)3.6SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗形态指标的影响3.6.1SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗株高的影响SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗株高的影响见表1。观察黄瓜幼苗得知,只在盐胁迫下的黄瓜幼苗,长势弱,植株矮小,由图可知,在NaCl胁迫下,黄瓜幼苗的株高显著降低。而施用不同浓度的SNP处理后,这种抑制作用有所缓和。从数值上分析,低浓度的SNP可以增加黄瓜的株高,但随着浓度的增加,幼苗的株高又出现降低趋势,其中4mg/KgSNP处理的提高最大,基本达到CK水平,而10mg/KgSNP处理对黄瓜幼苗的株高的促进作用已趋于无效,基本和不施用SNP黄瓜幼苗的株高一样。3.6.2SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗茎粗的影响SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗茎粗的影响见表1。4mg/Kg的NaCl处理显著地降低了黄瓜幼苗的茎粗,而施用SNP处理后,各组处理后黄瓜幼苗的茎粗都有所增加。6mg/KgSNP胁迫下,黄瓜幼苗的茎粗显著增加,低浓度的SNP处理可以有助于盐胁迫显著增加幼苗茎粗,但随着处理浓度的增加,反而会减弱盐胁迫对幼苗的促进作用,从数值上分析,6mg/Kg19 河南科技大学毕业设计(论文)SNP对NaCl胁迫下的黄瓜幼苗的茎粗的促进作用最大。3.6.3SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶片数的影响SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶片数的影响见表1。盐胁迫下的黄瓜植株每株的叶片数与CK相比没有显著的差异。低浓度的SNP处理可以增加叶片数目,但随着浓度的增加,反而会有抑制作用。但这种作用效果不是十分明显。其中6mg/KgSNP和8mg/KgSNP对提高黄瓜苗的叶片数效果较明显。实验过程中,有出现4mg/KgNaCl处理的黄瓜幼苗的叶片发黄萎焉甚至干枯现象,其他组处理光挂幼苗叶片长势良好。3.6.4SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶长叶宽的影响SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶长叶宽的影响见表1。盐胁迫下,对黄瓜幼苗的叶长叶宽影响并不显著,不同浓度的SNP处理与CK相比,也没有明显的差异。从数值上分析,低浓度的SNP可以增加黄瓜的叶面积,但随着浓度的增加,幼苗的叶面积降低,其中10mg/KgSNP处理对黄瓜幼苗的叶长叶宽的影响水平已经趋于无效,基本和无SNP处理水平一样,而2mg/KgSNP处理和4mg/KgSNP的提高最大。观察实验,只在盐胁迫下的黄瓜幼苗叶形不整齐,叶缘发黄,而施用SNP的处理,黄瓜幼苗均无此现象。表1SNP处理对NaCl胁迫下黄瓜幼苗形态指标的影响处理叶片数茎粗株高叶长叶宽(个)(cm)(cm)(cm)(cm)A6.500.52028.412.213.1B4.000.45617.59.310.9C4.250.47224.311.312.4D5.250.48226.210.312.4E6.250.49026.610.710.9F6.000.46821.310.110.7G5.500.45618.69.610.019 河南科技大学毕业设计(论文)4结论与讨论4.1结论通过本实验得出如下结论:(1)NaCl促进了黄瓜幼苗中叶绿素,可溶性糖含量,但不太显著,对蛋白质含量有明显的促进作用,对过氧化氢酶,过氧化物酶活性有明显的抑制作用。低浓度的SNP处理能缓解盐胁迫下的抑制作用,浓度过高的SNP处理反而加重盐胁迫的抑制作用。6mg/KgSNP处理能显著地提高了黄瓜叶片中叶绿素含量,而4mg/KgSNP可明显提高叶片中可溶性糖和蛋白质的含量,4mg/KgSNP和6mg/KgSNP处理分别对NaCl胁迫下的过氧化氢酶,过氧化物酶的活性有明显的增强作用,SNP处理的浓度越高,对NaCl胁迫下各类物质的促进作用或抑制作用反而会减弱。(2)低浓度的SNP可以缓解NaCl胁迫对黄瓜幼苗的形态指标如株高,茎粗,叶片数,叶长叶宽的抑制作用,高浓度的SNP处理会减弱这种效应。6mg/KgSNP处理对盐胁迫下的形态指标的促进作用最显著。4.2讨论4.2.1SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗的光合作用的影响有研究证实0.1~0.3mmol/L外源一氧化氮供体SNP处理豌豆,黄瓜,玉米和刺槐种子可以明显促进这些植物的发芽势,发芽率[20];对幼苗的叶绿素含量和生物量也有明显的促进作用;随着SNP浓度的增加,幼苗生长明显受到抑制[21]。对辣椒的研究表明,NaCl胁迫对植物的伤害最终体现在生长受抑制,生物量积累下降,叶绿素含量是反映光合作用强度的重要指标[22]。植物受到NaCl胁迫时,各种生理过程都会受到影响,直接或间接地影响到叶绿素的含量19 河南科技大学毕业设计(论文)。本实验表明,NaCl胁迫下黄瓜叶片叶绿素含量的下降,施加外源SNP可维持黄瓜叶片较高的叶绿素含量,有助于黄瓜在光合作用过程中对光能的吸收和提高转化效率,从而对维持NaCl胁迫下黄瓜较高的光合速率有一定的促进作用。NaCl胁迫下植物光合作用下降的原因尚未形成统一的认识。一般认为渗透胁迫可能是盐抑制植物光合作用的原因之一,即NaCl胁迫下引起水势及气孔导度降低,限制CO2到达光合机构,从而抑制光合作用。叶片光合作用速率的降低由气孔因素和非气孔因素所致,胞间CO2浓度升高和气孔导度下降则气孔因素是主要的[23]。有研究表明,NaCl处理大幅度的降低黄瓜叶片中叶绿素含量,并降低叶绿素的光化学活性,使电子传递速率,光能转化率等大幅度降低,造成光能转化为化学能的过程受阻,必将会进一步加剧低光合放氧和碳同化能力[24]。因此,植物不能有效地合成和积累有机物,黄瓜幼苗的相对生长速率显著降低。结合本实验结果分析,可知SNP处理提高了盐胁迫下的黄瓜幼苗叶绿素含量,并缓解了盐胁迫对PSⅠ和PSⅡ的伤害,增强了植物合成和积累有机物的能力,这可能是NO提高植物耐盐性的重要生理原因。4.2.2SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗的可溶性糖和可溶性蛋白质含量的影响。可溶性糖在盐逆境条件下既是非盐生植物的主要渗透调节剂,也是合成其他有机溶质的碳架和能量来源,还可以在细胞内无机离子浓度高时起保护酶类的作用[24]。田晓燕等的结果表明,盐胁迫下可以提高NHC牧草中可溶性糖和可溶性蛋白质的含量,可以作为渗透调节物质避免植物体内在逆境条件下受到伤害,以对外环境做出的条件反应,来保证植物体内的正常的生理功能的实现[25]。本实验得出类似结论,NaCl处理显著增加了黄瓜叶片中可溶性糖含量,低浓度的SNP处理后则显著降低,说明SNP能够减轻盐胁迫下糖积累对黄瓜光合作用造成的反馈抑制。同样的,低浓度的SNP处理可使可溶性蛋白质含量上升。但随着处理浓度的升高,反而加强盐胁迫的效应,给植物体造成伤害。4.2.3SNP对NaCl胁迫下黄瓜幼苗的过氧化物酶,过氧化氢酶活性的影响19 河南科技大学毕业设计(论文)研究表明,盐胁迫,植株有机体衰老,环境污染,低温,干旱等逆境伤害方面均会引起活性氧积累量的提高,这些大量积累的活性氧若不及时清除,必然会造成氧化胁迫,引起膜质过氧化,导致膜系统受到破坏[26]。植物体内存在着酶促和非酶促两类防御活性氧毒害的保护系统,可以清除不断产生的有害活性氧,保护光和器官,膜及生物功能分子等[27]。过氧化物酶,过氧化氢酶是重要的抗氧化酶。本实验结果表明,正常生长条件下,低浓度SNP处理显著提高了黄瓜叶片的过氧化物酶和过氧化氢酶的活性,减轻了盐胁迫引起的膜质过氧化,提高了植株抵御盐害的能力,但随着浓度的增加,这种抵御作用有所减弱。在小麦,玉米盐胁迫中得到类似结论(阮海华等,2001;2004;王宪叶等,2004;张艳艳等,2004)。外源NO诱导渗透胁迫下黄瓜幼苗叶片SOD活性的提高则可能与作为信号分子来影响SOD编码基因的表达有关[28]。因此,如果能从外界调控NO合成的酶促途径以及通过对相关基因的遗传操作等措施来适当调节内源NO的水平,将可缓解各种逆境胁迫所造成的膜质过氧化,提高植物的各种耐性和抗(病,虫)性。19 河南科技大学毕业设计(论文)参考文献[1]ParidaA,DasAB.Salttoleranceandsalinityeffectsonplants[J].EcotoxicolEnvrionSafe,2005,60:324-349.[2]ZhuJK.Plantsalttolerance[J].Trendsinplantsci.2001,6:66-71.[3]KeYQ,PanTG.EffectofNaClstressonwatermetabolism,photosyntheticrateandintraneousABAinleavesofsweetpotato[J].PlantNutritionandFerticizerScience.2001,7(3):337-343.[4]陈洁,林栖凤;植物耐盐生理及耐盐机理研究进展[J];海南大学学报(自然科学版);2003年02期[5]王学军;日光温室土壤次生盐渍化分析[J];北方园艺;1998年Z1期[6]盖玉红;盐生和中生植物对盐害的响应及其抗性结构机制研究[D];东北师范大学[7]焦娟;外源NO对NO_3~-胁迫下黄瓜幼苗生长及生理特性的影响[D];山东农业大学;2010年[8]张洁明,孙景宽,刘宝玉等,盐胁迫对荆条,白蜡,沙枣种子萌发的影响[J].植物研究,2006,26(5):595-599.[9]王秀玲,盐对夏至草种子萌发以及盐胁迫解除后种子萌发能力的恢复的影响[J].植物生理学通讯,2008,44(3):436-440.[10]胡生荣,高永,武飞,等。盐胁迫对两种无芒雀麦种子萌发的影响[J].植物生态学报,2007,,31(3):513-520.[11]王素平,郭世荣,李璟,等。盐胁迫对黄瓜幼苗根系生长和水分利用的影响[J].应用生态学报,2006,17(10):1883-1888.[12]ZhaoFG,SunC,LiuYL,etal.Relationshipbetweenpolyaminemetabolisminrootansaltoleranceofbarlyseedlings[J].ActaBotSin,2003,45(3):295-292[13]吴薇;杂交新美柳的盐胁迫响应及外源NO处理的调节作用[D];南京林业大学;2008年19 河南科技大学毕业设计(论文)[14]郁继华;雍山玉;张洁宝;徐晓昀;闫晓花;王玉洁;;外源NO对NaCl胁迫下辣椒幼苗氧化损伤的保护效应[J];西北植物学报;2007年09期[15]李明,王根轩.干旱胁迫对甘草幼苗保护酶活性及脂质过氧化作用的影响[J].生态学报,2002,22(4):503-507.[16]AliH,Tuchertc,Thompsontl,etal.Effectsofsalinityandmixedammoniumandnitratenutritiononthegrowthandnitrogenutilizationofbarlely[J].AgroCropSci,2001,186:223-228[17]张轶婷;崔世茂;张晓梅;姜伟;单艳敏;;草炭复配基质特性及对黄瓜、番茄、辣椒幼苗生长的影响[J];内蒙古农业大学学报(自然科学版);2011年02期[18]李合生,孙群,赵世杰,等.植物生理生化原理和技术[M].北京:高等教育出版社,2000:134-261.[19]薛应龙.植物生理学实验手册[M].上海:上海科学技术出版社,1985:191-192.[20]赵翔;魏金凤;汪延良;王亚静;王西丽;张骁;;外源Ca~(2+)和NO缓解小麦幼苗盐害的生理机制[J];河南大学学报(自然科学版);2009年02期[21]雍山玉;外源一氧化氮(NO)对盐胁迫下辣椒种子萌发和幼苗生理特性的影响[D];甘肃农业大学;2007年[22]3肖强;陈娟;吴飞华;郑海雷;;外源NO供体硝普钠(SNP)对盐胁迫下水稻幼苗中叶绿素和游离脯氨酸含量以及抗氧化酶的影响[J];作物学报;2008年10期[23]朱新广,张其德,匡廷云;NaCl胁迫对PSII光能利用和耗散的影响[J];生物物理学报;1999年04期[24]李广敏,唐连顺,商振清,等.渗透胁迫对玉米幼苗保护酶系统的影响及其抗旱性的关系[J].河北农业大学学报,1994,17(2):l-6.[25]严顺平;苏维埃;汤章城;孙卫宁;;水稻根中盐胁迫响应蛋白的蛋白质组学的分析[A];中国蛋白质组学第二届学术大会论文摘要论文集[C];2004年[26]於丙军,刘友良;盐胁迫对一年生盐生野大豆幼苗活性氧代谢的影响[J];西北植物学报;2003年01期[27]曹宛虹.作为叶绿体H2O2分解系统关键酶的抗坏血酸过氧化物酶[J].植物生理学通讯,1994,30(6):452-458.19 河南科技大学毕业设计(论文)[28]韩冰;郭世荣;金春燕;孙锦;;钙对盐胁迫下黄瓜幼苗膜脂过氧化和抗氧化酶活性的影响[A];纪念中国农业工程学会成立30周年暨中国农业工程学会2009年学术年会(CSAE2009)论文集[C];2009年19 河南科技大学毕业设计(论文)致谢本论文是在导师蒋燕副教授悉心指导下完成的,导师学识渊博,思维敏锐,治学态度严谨,待人真诚、宽容,对学生充满爱心和耐心。本论文的完成离不开蒋老师的督促和教导,在此,谨向导师蒋燕副教授致以崇高的敬意和最衷心的感谢!感谢同学袁博同学在实验设计及实验操作过程中的宝贵建议和无私帮助;感谢舍友王瑞、董慧及同学王柏、田中欢对实验过程中苗子的看管和实验操作中的大力协助;感谢已毕业的侯小进学姐在实验和学习上给予我的帮助和指导,感谢同学朱彦群对实验器材的支助和实验过程中的协助;感谢牛欢欢、常丁皓对实验所需药品的提供。在此一并向他们表示我最衷心的感谢和美好的祝愿!感谢与我朝夕相处的舍友王瑞,董慧,何彩云,王雪芬,陈浩然一直以来对我学业上的关心和生活上的帮助,以及这一段共度的美好时光!感谢我的亲人们对我学业的大力支持和生活上的无限关怀,你们是我奋斗的不竭动力。藉此论文完稿之际,向参加本论文评阅和答辩委员会的各位老师致以最诚挚的谢意!最后,再次向所有给予我帮助、支持和关心的人表示我最衷心的感谢!姓名:万晶琼2014年5月15日19'