GBT27859-2011化学品沉积物-水系统中摇蚊毒性试验加标于沉积物法.pdf 20页

'ICS13．300A80a冒中华人民共和国国家标准GB／T27859--201化学品沉积物一水系统中摇蚊毒性试验加标于沉积物法Chemicals--Sediment-waterchironomidtoxicitytest—Spikedsedimentmethod2011-12-30发布2012-08-01实施宰瞀徽紫瓣警糌瞥星发布中国国家标准化管理委员会履19 标准分享网www.bzfxw.com免费下载刖罱GB／T27859--201本标准按照GB／T1_1—2009给出的规则起草。本标准与经济合作与发展组织(OECD)化学品测试导则218<(沉积物一水系统中摇蚊毒性试验加标于沉积物法》(英文版)技术内容相同。本标准做了下列结构和编辑性修改：——为与现有系列国家标准一致，将标准名称改为《化学品沉积物一水系统中摇蚊毒性试验加标于沉积物法》；——将OECD218中的“介绍”作为本标准的。引言”；——将OECD218中的附件1“术语和定义”作为本标准的第3章“术语和定义”。本标准由全国危险化学品管理标准化技术委员会(SAC／TC251)提出并归口。本标准起草单位：江苏出入境检验检疫局、中国检验检疫科学研究院。本标准主要起草人：张军祖、陈会明、周秋红、徐炎、丁华、陆卫群。 标准分享网www.bzfxw.com免费下载GB／T27859--2011引言本标准用于评估化学品长期暴露对处在沉积物中的淡水双翅目摇蚊属(Chironomussp．)幼虫的影响。它以已有的Chironomusriparius和Chironomustentans的毒性试验方法为基础，上述摇蚊毒性试验方法已在欧洲o’33和北美‘“3建立并通过了比对试验[““⋯。本标准也可使用其他已有充分实证的摇蚊种类，如Chironomusyoshimatsui口““。应根据试验的应用目的选择适当的暴露场景。本标准中的暴露场景是在沉积物一水系统中将定量的受试物质添加于沉积物中，即加标于沉积物。该暴露场景用于模拟沉积物中存在的化学品的蓄积水平。要用沉积物中的生物测试的受试物质通常可在这个系统中存在很长时间。沉积物中的生物可通过多种途径暴露受试物质。每种暴露途径的相对重要性，以及每种暴露的时间对总体毒性效应的贡献，取决于相关化学品的理化特性。对于强吸附物质(如lgK。，>5的物质)，或与沉积物共价结合的物质，让受试生物摄取加了受试物的食物可能是一条重要的暴露途径。为了不低估高亲脂性物质的毒性，可考虑在使用受试物之前向沉积物中加入饲料。为了将所有潜在的暴露途径纳入考虑之中，本标准将重点关注长期暴露。C．riparius和C．yoshimatsui的试验持续时间为20d～28d，C．tentans为28d～65d。如果因特殊目的，需要短期数据，例如研究不稳定化学品的毒性效应，可用附加的平行试样进行试验，并在10d后放弃。试验的最终结果为羽化的成虫总数和羽化时间。如果需要额外的短期数据，建议只能适当增加额外的平行试验，在试验进行10d后，进行幼虫的存活和生长的测量。本标准建议使用人工配制沉积物。与天然沉积物相比，配制沉积物有几个优点：——因为配制沉积物为可再生的“标准化基体”，减少了实验的不确定性，并且没必要去寻找未被污染的清洁沉积物来源；——试验可在任何时候开始，而不必面对试验沉积物的季节性变化，也不必对沉积物进行预处理，以去除本土动物群。使用配制沉积物也减少了去野外收集足量的用于常规试验的沉积物的相关费用；——使用配制沉积物，使毒性数据可以相互比对，从而进行物质的毒性分类。Ⅱ 标准分享网www.bzfxw.com免费下载1范围化学品沉积物一水系统中摇蚊毒性试验加标于沉积物法GB／T27859--2011本标准规定了加标于沉积物法评估沉积物一水系统中摇蚊毒性的试验方法。本标准适用于评估化学品长期暴露对于处在沉积物一水中的淡水双翅目摇蚊属(Chironomussp．)幼虫的影响。2规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB／T21809化学品蚯蚓急性毒性试验3术语和定义3．13．23．33．4下述术语和定义适用于本文件。配制沉积物formulatedsediment用来模拟天然沉积物物理成分的混合物，也可称为再生沉积物、人工沉积物或合成沉积物。上覆水overlyingwater试验容器中处于沉积物之上的水。间隙水interstitialwaterorporewater沉积物和土壤颗粒之间的水。加标沉积物spikedsediment已经添加了受试物的试验用沉积物。4原理将一龄摇蚊幼虫暴露于一系列含有不同浓度的受试物的沉积物一水系统中进行试验。先将受试物加入沉积物中，待烧杯中的沉积物和水陈化后，将一龄摇蚊幼虫引入烧杯。在试验结束时，测量摇蚊羽化数和发育速率。如果需要，也可在10d后测量存活幼虫数和质量(使用适当的附加平行试样)。所测实验数据可用回归模型分析，以估计导致羽化率或幼虫存活率或生长率下降z％的浓度(如15％有效浓度EC。；，半数有效浓度Ec5。等)，或者用统计假设检验来测定无可观察效应浓度(NOEC)或者最低可观察效应浓度(LOEC)。后者需要用统计检验方法，以将效应值与对照值进行比较。1 标准分享网www.bzfxw.com免费下载GB／T27859--20115受试物信息应了解受试物的溶解度、蒸汽压、经测量或计算而得的在沉积物中的分配量、以及在水和沉积物中的稳定性等。还需要有一种可靠的分析方法，用于上覆水、间隙水和沉积物中受试物的定量测定，并具有已知的和报道过的准确度和检出限。有用的信息还包括受试物的结构式、纯度、化学归宿(如衰减、生物与非生物降解等)。如果受试物质的理化性质导致其很难进行本试验，则可参考相关文献‘1。“。6参考物质定期进行参考物质的试验，以验证试验方案和试验条件的可靠性。已成功应用于比对试验和有效性研究的参考毒物有林丹、氟乐灵、五氯苯酚、氯化镉和氯化钾o“54““。7质量保证与质量控制为使试验有效，应满足下列条件：a)试验结束时，对照组的羽化率不应低于70蝌1‘61；b)对照容器中的C．riparius和C．yoshimatsui应在引人后的12d～23d内羽化为成虫}C．#enf∞s则需要20d～65d；c)试验结束时，应测量每个试验容器中的pH值和溶解氧浓度。溶解氧浓度应不低于该温度下空气饱和值(ASV)的60％，所有试验容器中上覆水的pH值应在6．o～9．0之间；d)水温变化不超过土1．0℃。可用恒温室来控制水温，并按适当的时间间隔进行记录。8试验方法描述8．1试验容器试验在直径为8cm的600mL玻璃烧杯中进行。也可使用其他容器，但应确保上覆水和沉积物的适宜深度。沉积物表面应足够为每条幼虫提供2cm2～3am2的面积。沉积层深度与上覆水深度之比应为1：4。试验容器和其他与试验系统直接接触的器具应全部用玻璃或其他化学惰性材料(如聚四氟乙烯)制成。8．2受试物种选择试验所选用的适宜物种为C．riparius。也可选用C．tentans，但试验操作更困难，试验周期更长。也可选用C．yoshimatsui。附录A提供了C．riparius的详细培育方法。其他种类的培育条件也可获取，如C．tentans⋯和C．yoshimatsuiCl“。试验前应确认受试物种类，但如果使用室内培育的生物，可不必在每次试验前做如此确认。8．3沉积物8．3．1优先选用配制沉积物。如果使用天然沉积物，应做性质表征(至少应测pH值、有机碳含量；也建议测定其他参数，如碳氮比和粒度等)，并且该天然沉积物未受污染，不存在与摇蚊竞争或捕食摇蚊的其他生物。在用于摇蚊毒性试验以前，建议先将天然沉积物在与后续试验相同的条件下陈化数天。下列配制沉积物是以GB／T21809中使用的人造土壤为基础的，推荐在本试验中使用m“‘1“。2 标准分享网www.bzfxw.com免费下载GB／T27859--2011——4％～5％(干重)泥炭：pH值尽可能在5．5～6．0之间；重要的是应采用粉末状泥炭，研磨成粉末(粒度≤1ram)，只能空气干燥。——20％(干重)高岭粘土(高岭石含量最好大于30％)。——75％～76％(干重)石英砂(以细砂为主，50％以上的石英砂颗粒应在50pm～200pm)。——加入去离子水，使最终混合物中的水分含量为30％～50％。——加入化学纯碳酸钙(CaCOa)将最终混合物的pH值调节至7．05=0．5。——最终混合物中的有机碳含量应为2．o％士0．5％，可分别用适量的上述泥炭和石英砂调节。8．3．2泥炭、高岭粘土和石英砂的来源应清楚。沉积物组分应经检查无化学污染(如重金属、有机氯化合物、有机磷化合物等)。附录B描述了配制沉积物的制备情况。如果能证实在加人上覆水后，不会发生沉积物组分的分离(如泥炭颗粒的漂起)，并且泥炭或沉积物已充分陈化，也可用干燥组分直接混合进行制备。8．4水附录A和附录c列出了可使用的稀释水的化学指标，任何符合这些指标的水均可作试验用水。在整个培育和试验过程中，如果摇蚊能够存活于其中而未显不适，则任何适宜的水，包括自然水(地表水)、配制水(参见附录A)以及除氯的自来水等，都可用作培育用水和试验用水。试验开始时，试验用水的pH值应在6．o～9．0之间，总硬度不大于400mg／L(以CaCO。计)。但是，如果怀疑硬度离子与试验物质之间有反应，则应使用硬度低一些的水(因此，在此情况下不能使用ElendtM4介质，参见附录B)。在整个试验过程中应自始至终使用同一类型的水。附录C中所列的水质特性指标每年至少应测定两次，当怀疑这些指标可能发生显著变化时，也应进行检测。8．5储备液-加标沉积物通常将受试物溶液直接加入沉积物中，以制备成选定浓度的加标沉积物。将受试物溶解于去离子水中制得储备液，再用振荡器、搅拌器或人工混合的方法将储备液与配制沉积物混合。如果受试物难溶于水，可将其溶于尽可能少的适宜有机溶剂中(如正己烷、丙酮或氯仿)；将此溶液与10g石英细砂混合，每10g石英砂适合一个试验容器的量；有机溶剂被挥发直至完全从石英砂中去除；再将该份石英砂与一个烧杯中的适量沉积物混合。只有易挥发性试剂才可以用来助溶、分散或乳化受试物。在配制沉积物时，应考虑由受试物与石英砂组成的混合物带人的石英砂的量(即在配制沉积物时应相应减少石英砂的用量)。注意应确保加入沉积物的受试物完全均匀地分布于沉积物中，必要时可分析副样以测定其均匀性。9试验的设计9．1总则试验设计涉及选择试验浓度的组数以及浓度的间距(组距)、每个浓度的试验容器数和每个试验容器中的幼虫数。应对EC点的估算、NOEC的估算，以及限度试验的设计进行描述。9．2回归分析的设计9．2．1效应浓度(如EC。EC；。)和所关注的受试物质的效应浓度范围应包含在试验所用的浓度范围内。一般说来，当效应浓度处于试验浓度的范围内时，评估效应浓度(E巳)的准确性、特别是有效性可得到提高。应避免出现大大低于最低阳性浓度和大大高于最高浓度的情况。探寻浓度范围的预试验有助于选择拟采用的浓度范围。3 GB／T27859--20119．2．2如需估计E巴，应至少设置5组试验浓度，每个浓度3份平行试样。为使评估模型更为准确，试验的浓度应足够多。浓度间隔比例因子应不大于2(除非剂量响应曲线的斜率很小)。当不同响应的试验浓度的组数增加时，可以减少每个浓度的平行试样的组数。增加平行试样组数或减小试验浓度的间隔可减小试验结果的置信区间。如果需要评估幼虫10d的存活和生长情况，则需增加额外的平行试样。9．3评估NoEc／LOEC的设计如需评估NOEC／LOEC，应设置5组试验浓度，每个浓度至少4个平行试样，浓度间隔比例因子应不大于2。为了保证足够的统计效能，以便在5％的显著水平上(p一0．05)检测出与对照组20％的差异，平行试样的组数应足够多。如需评估生长率，可用方差分析法(ANOVA)，如Dunnett检验和Wil—liams检验等06。1⋯。在进行羽化率评估时，可用Cochran-Armitage检验、Fisher精确检验(经Bonferroni修正)或者MantelHaentzal检验。9．4限度试验如果在探寻浓度范围的预试验中没有观测到任何效应，则可进行限度试验(一个试验浓度和一个对照浓度)。限度试验的目的就是在一个足够高的浓度下进行试验，排除该物质可能产生的毒性效应。限度值设定在一个预期在任何情况下都不会出现毒性浓度。推荐浓度为1000mg／kg(干重)。试验和对照各需至少6个平行试样。应证明试验有足够的统计效能，能够在5％的显著水平上(p一0．05)检测出与对照组20％的差异。对于度量的效应结果(生长率和质量)，如果数据满足t检验的要求(正态，齐性方差)，则￡检验是一种合适的统计方法。如果数据不能满足这些要求，可以应用方差不齐t检验，或者非参数检验，如Wilcoxon-Mann-Whithey检验。对于羽化率，则可用Fisher精确检验。10试验步骤10．1暴露条件10．1．1加标沉积物-水系统的制备10．1．1．1受试物的加入推荐参照GB／T21809中描述的加标步骤。将加标沉积物放人试验容器，再加入上覆水，形成一个体积比为1：4的沉积物一水系统(见8．1和8．4)。沉积层厚度应为1．5em～3cm。在向水柱体中加入试验溶液时，为了避免沉积物分层和再次激起微小颗粒悬浮在水中，可在沉积物上盖一个圆形塑料片，把溶液倒在塑料片上，然后立即将塑料片移开。也可以用其他合适的器具。10．1．1．2应在试验容器上加一个玻璃皿之类的盖子。必要时，试验过程中可加水使水达到初始的体积以补偿水分的挥发。只能加入蒸馏水或去离子水以避免盐他增加。10．1．2陈化加标沉积物一水系统制备完成后，应让受试物在水相和沉积物中进行重新分配[3_“6““。陈化应在与试验相同的温度和通风条件下进行。适宜的平衡时间取决于沉积物和化学品的特性，可能是数小时到数天，在罕见情况下可达几个星期(4周～5周)。由于长时间将导致许多化学品的降解，所以不必等待平衡出现，而建议将平衡时间定为48h，平衡期的后期，应检测受试物在上覆水、间隙水和沉积物中的浓度，至少要检测受试物在最高试验浓度和一个较低浓度的试验系统中的分布情况。这些对受试物质的分析测定结果可用于计算质量平衡，表述与实测浓度有关的检验结果。10．1．3加入受试生物10．I．3．1在向试验容器中加入受试生物的4d～5d前，应将卵块从培养器中取出，移至加了培养介质4 GB／T27859--2011的小容器中。可使用培养器中现成的已陈化介质，也可用新配制的介质。如果用后者，应向培养介质中加入绿藻，和／或几小滴将切片鱼食磨细后的悬浮液的滤出液(参见附录A)。只能使用刚刚产出的卵块。正常情况下，卵出生2d～3d后幼虫就开始孵化(c．riparius，温度20℃下2d～3d；C．tentans，温度23℃下1d～4d；C．yoshimatsui，温度25℃下1d～4d)，幼虫至成虫共生长四龄，每龄4d～8d。用于试验的是一龄幼虫(孵出后2d～3d或1d～4d)。幼虫处于哪一龄可通过测量其头壳宽度来确定口]。10．1．3．2用一根钝头吸管将20只一龄幼虫随机放人每一个已含有加标沉积物和水的试验容器中。向试验容器加入幼虫时，只能停止通风，加入后再保持24h。每种浓度所加入的幼虫数量根据所使用的不同试验设计而定，用EC点估算法时每种浓度至少60只，而用NOEC测定法则至少为80只。10．1．4试验浓度10．1．4．1为了选定正式试验的浓度范围，可进行浓度范围的预试验；为此，需要使用一系列间隔较大的受试物质浓度。在与正式试验相同的摇蚊表面密度条件下，将摇蚊暴露于每一种受试物质浓度中一段时间，这样即可估算出适当的试验浓度。浓度范围的预试验不需要平行试样。10．1．4．2正式试验用的试验浓度是根据探寻浓度范围的预试验的结果来决定，至少要选用5种浓度。浓度的选定应与9．2和9．3的要求相符。10．1．5对照试验时要准备好对照容器，这些容器中不加入受试物质，但要加入沉积物。对照容器也要备好适当数量的平行试样(见9．2和9．3)。如果在8．5使用了某种溶剂，则要增加沉积物溶剂对照。10．1．6试验系统应使用静态系统。在某些特殊的情况下，比如水质指标变得不再适合受试生物或者影响化学平衡时(例如：水中溶解的氧气含量过低，排泄物含量过高，或者从沉积物中析出的矿物质影响水的pH值或硬度时)，也可使用半静态或流动系统：间断性或持续性地更新上部水体。尽管如此，通常情况下最好使用其他的改善上部水体质量的方法，比如通风；而避免使用半静态或流动系统。10．1．7饲料应及时给幼虫投食，最好每天一次或者每周至少三次。对于最初10d内的小幼虫，每条幼虫0．25mg／d～O．5mg／d(C．yoshimatui应为0．35mg～o．5mg)的鱼饲料(一种水悬浮液或者磨碎的精细饲料，例如Tetra-Min或Tetra-Phyll，详见附录A)应足够了。对于大一些的幼虫，饲料应稍多些：在余下的试验中，每条幼虫0．5mg／d～l_0mg／d应足够了。如果发现真菌生长或者对照中观察到死亡率，则所有试样和对照中的饲料供给量应减少。如果不能停止真菌的生长，则试验应重做。当试验强吸附物质(例如19K。，>5的物质)或者与沉淀物共价结合的物质时，应在陈化期前向配制沉积物中加入足量的饲料以确保幼虫的生存和自然生长。对此，应使用植物性饲料替代鱼饲料。例如，加入0．5％(干重)的磨细的植物叶子，叶子来源于刺荨麻(Ulticadioeca)、桑树(Morusalba)、白三叶草(Trifoliumrepens)、菠菜(Spinaciaoleracea)，或者其他植物原料(Cerophyl或者透明纤维素)。10．1．8孵化条件10．1．8．1加入幼虫24h后要给试验容器中的上覆水柔和通风，并且保持到试验结束(应注意溶解氧的浓度不得低于ASV的60％)。通风是通过固定在沉积层之上2cm～3cm处的一根玻璃巴斯德吸管进行的(即每秒1个或数个泡沫)。当试验挥发性化学物时，则不能给沉积物一水系统通风。10．1．8．2试验应在20℃土2℃的恒温条件下进行。对于C．tentans和C．yoshlmatui，推荐的温度分别是23℃士2℃和25℃士2℃。通常使用16h的光照周期，光照度应为500lux～l000lux。5 GB／T27859--201110．1．9暴露时间暴露从幼虫加入加标容器和对照容器时就开始。C．riparius和C．yoshimatui的最长暴露时间是28d，C．tentans是65d。如果蚊羽化较早，试验可在对照容器中最后一只成虫羽化之后的至少5d后结束。10．2观察10．2．1羽化10．2．1．1测定发育时间和完全羽化的雌雄蚊总数。从其羽状触角可轻易识别雄蚊。10．2．1．2每周至少进行三次观察，与对照容器中的幼虫相比较，目估加标容器中的幼虫的任何反常行为(例如离开沉淀物、非正常游动)。在预期的羽化期间，应每天对羽化蚊计数，每天记录完全羽化蚊的性别和数量。经过鉴别之后，应把蚊从容器中移出。应记录试验终止前的所有产出的卵块，然后移出，以防止幼虫再次引入沉积物。应记录能观察到的未能羽化的蛹数量。羽化的测量方法见附录D。10．2．2发育和存活如果需要幼虫10d的存活和发育资料，应在试验开始时，额外准备试验容器，以便在随后的试验中使用。使用250pm的滤网过滤从这些额外的试验容器中取出的沉淀物，滤出幼虫。对死亡的界定是死去，或者对机械刺激没有反应。未能再找到的幼虫也要统计为死亡(那些在试验初期就死去的幼虫可能已经被微生物分解)。测定每个试验容器中存活幼虫的干重(应无杂质)，计算每个试验容器中的平均单个幼虫干重。确定存活的幼虫处于哪个虫龄是很有用的，为此应测量每个幼虫的头壳宽度。10．3分析试验10．3．1受试物的浓度10．3．1．1试验开始(即加入幼虫)前，针对每种试验浓度条件，应至少从其中的一个试验容器中取出沉积物，检测其中的受试物浓度。建议在试验的开始和结束时，至少对最高浓度组和一个较低浓度组中的上覆水、间隙水和沉淀物样本进行测定。受试物浓度的检测结果可以显示受试物在水一沉积物中的行为或分布情况。10．3．1．2当要做期间测量(例如第7d)，以及需要分析大量的样本时，样本的取出势必影响整个试验系统，此时应采用额外的试验容器；这些额外的试验容器在与正式试验容器相同的条件下进行处理(包括引入受试生物)，但不用来作生物学观察，仅用于从中进行取样分析。10．3．1．3推荐用离心法分离间隙水，条件为：10000g(g为自由落体加速度值)、4℃、30min。但是，如果能够证实受试物不被吸附在过滤器上，也可以用过滤法。在一些情况下，因为试样量太少，几乎不可能分析间隙水的浓度。10．3．2理化参数用适当方法测量试验容器中的pH和温度(见第7章)。在试验开始和结束时，应测量最高浓度的一个试验容器以及对照容器中的硬度和氨度。”数据和报告11．1结果处理11．1．1本试验的目的是测定受试物对摇蚊发育速率和完全羽化的雌雄蚊总数的影响，或者在为期6 GB／T27859--201110d的试验中测定受试物对存活幼虫的数量和质量的影响。如果没有迹象显示摇蚊性别对统计灵敏度存在差异时，则雌雄的结果可以合并统计。灵敏度差异存在与否可用统计方法判定，例如x2-rX2表检验。在为期10d的试验中，应测定幼虫存活数和每个容器中的平均个体干重。11．1．2根据试验开始时测得的沉积物中受试物浓度来计算效应浓度，效应浓度应以干态质量为基础。11．1．3为了计算ECs。或其他EQ值，每个试验容器的统计数据值可当作真实的平行试验值。计算任何EC：的置信区间时，应考虑这些数值之间的偏差，或者要证明偏差小到可以忽略不计。当适用最小平方模式时，每个试验容器的统计数据值需通过转换来改善偏差的同质性。但计算EC；值时，应将响应数据转换回原值。11．1．4为了测定NOEC／LOEc，当用假设检验法进行统计分析时，应考虑到每个试验容器的统计数据值的偏差，此时可用嵌套的ANOVA法；或者，当不符合通常的ANOVA法设定时，则需要进行更多更充分的试验”⋯。11．2羽化率11．2．1羽化率是离散数据，当剂量一效应关系预期为单向，并且这些数据也符合这一预期时，可用递减的方法进行Cochran-Armitage检验。否则，应使用Fisher精确检验或者Bonfeeroni—Holm修正P值的ManteLHaentzal检验。当相同浓度的平行试验的偏差比二项式分布更大(通常被称为“外二项式”偏差)，则应用稳健的Cochran-Armitage检验或者Fisher精确检验。11．2．2每个试验容器中蚊的羽化总数n。，除以加入的幼虫的数量‰，即得羽化率，见式(1)：‰——每个容器中羽化蚊的数量；n。——每个容器中加入的幼虫数。11．2．3当存在Sb--项式偏差时，最适合于大样本量的可选方法就是把羽化率当成一个连续的效应值。当剂量一效应关系预期为单向，并且ER值也符合这一预期时，应用像William检验这样的程序。当剂量一效应关系不保持单向时，则适用Dunnett检验。这里把大样本量定义为：在一个平行试验(一个容器)中，羽化数和未羽化数都超过5。11．2．4使用ANOVA方法时，ER的值应该通过平方根一反正弦转换或Turkey-Freeman转换以获取一个近似正态分布并使方差齐性。当使用绝对频数时，可以应用Cochran-Armitage检验、Fisher精确(130nferroni)检验或Mantel—Haentzal检验。平方根一反正弦转换是对ER的平方根求反正弦(sine“)值。11．2．5使用回归分析计算羽化率EG(例如可使用probit‘2“、logit、Weibull、或合适的商用软件等)。如果不能用回归分析(例如部分效应值少于两个)，则使用其他非参数方法比如移动平均或简单插补。11．3发育速率11．3．1平均发育时间表示由从刚引入幼虫(试验第0d)到大群实验性羽化成虫所跨越的平均时间(为了正确计算发育时间，应考虑幼虫引入时的虫龄)。发育速率(单位：l／d)是发育时间的倒数，表示每天羽化的幼虫的比率。对于评估沉积物毒性研究而言，发育速率更重要，因为与发育时间相比，它的偏差更低，更均一，更接近正态分布；因而更有效的参数检验程序可以用于计算发育速率而不是发育时间。因为发育速率是一个连续效应值，Ee值可以使用回归分析来估算02’2“。11．3．2对于下列统计检验，观察第z天所观察到摇蚊数量假定为从第z天到第z—L天(L一观察间隔的长度，通常为1d)中羽化而成。每个容器的平均发育速率(z)根据式(2)计算：7‰一m率化羽鞋 GB／T27859--20”：一i1。蒿"fm式中：z——每个容器的平均发育速率；i——观察间隔指数；m——观察间隔最大值；^——观察间隔i中所羽化的摇蚊数量；n。——至实验最后阶段所羽化的摇蚊总数(一∑，。)；z。——在观察间隔i中所羽化的摇蚊发育速率。11．3．3在观察间隔i中所羽化的摇蚊发育速率z；按照式(3)计算z。=1／(d，一导)式中：d。——观察的天数(从加入幼虫起算的日期)；z。——观察间隔i的长度(日期，通常为1d)。”．4试验报告11．4．1受试物：——物理特性，相关的物理一化学特性[溶解度，蒸汽压，土壤(或沉淀物中)的分配系数，水稳定性等]；——化学识别信息(通用名、化学名、结构式以及cAs号等)，包括纯度和定量分析方法。11．4．2受试生物：——试验使用的生物的种类、学名、来源和饲养条件；——处理卵块和幼虫方法的信息；——加入试验容器时受试生物的虫龄。11．4．3检测条件：——使用的沉积物，如：天然或人工配制的沉积物；——对于天然沉积物，应记录沉积物取样地区的位置并作描述。如可能，还应包括污染史和天然沉积物的特性：pH值、有机碳含量、碳氮比率和粒度(如合适)；——配制沉积物的制备：成分和特性(在试验开始前有机碳含量，pH值，水分等)；——试验用水的准备(如使用配制水)及其特性(在试验开始前的氧浓度，pH值，传导率，硬度等)；——沉积物和上覆水的厚度；——上覆水和间隙水的体积，沉积物分别含间隙水和不含间隙水的质量；——试验容器(材料和尺寸)；——加标沉积物的方法：检测浓度，平行试样组数和使用的溶剂(若使用)；——加标沉积物，水系统的稳定平衡阶段：持续时间和状态；——孵化条件：温度，光照周期和强度，通风(频率和强度)；——喂养方面的具体信息包括饲料的种类、制备、喂养数量和喂养方案。11．4．4结果：——理论试验浓度，实际测量的试验浓度和决定试验容器中试验物浓度的所有分析结果；——试验容器中的水质，如：pH值、温度、溶氧量、硬度以及氨度；——如果在试验过程中对蒸发了的试验用水进行了补偿，则应记录；——每天每个容器内成长为雄蚊和雌蚊的数量；8 GB／T27859--2011——每个容器内没能成长为摇蚊的幼虫的数量；——每个容器内单个幼虫的平均干态质量；如合适，测量每一龄虫的平均干态质量；——每个平行试样和每个检测浓度的羽化百分率(雄蚊和雌蚊合计)；——每个试验容器中的完全羽化成蚊的平均发育率和处理率(雄蚊和雌蚊合计)；——估计毒性效应值，例如EC(及其相关的置信区间)，NOEC和／或LOEC，以及所用的统计方法；——结果讨论，包括任何偏离本标准会对试验结论产生的影响。 GB／T27859--2011A．1摇蚊培养方法附录A(资料性附录)推荐的摇蚊培养方法摇蚊幼虫的培养可以在沉积器皿或更大的容器中进行。在容器的底部铺上一薄层石英砂，厚度约5mm～10mm，也可以用硅藻土(如Merck，Art8117)代替(厚度更薄，仅需几毫米就足够)。然后加入适用的水，水深数厘米。应补充蒸发损失，保持水位，防止干燥。如需要，可以更换水。还应提供平缓的通风。摇蚊幼虫的培养箱外面应加一个笼子，以防止羽化后成虫的逃逸。笼子应足够大(至少30em×30CITI×30em)，这样成虫能成群并交配。笼子应放置于室温下或温度为zo℃士2℃的恒温环境中[16h光照(强度1000Ix)，8h黑暗]。据报道，空气湿度(RH)小于60％会阻止摇蚊的繁殖。A．2培养水任何适用的天然水或配制水都可使用。一般推荐使用井水、去氯的自来水和人工介质(如下述Elendt“M4”或“M7”)。水在使用前应鼓氧。如需要，培养水可以用倾倒或虹吸法更换，应小心别损害到幼虫的管状巢。A．3幼虫的喂食摇蚊幼虫用鱼食喂养(用TetraMin，TetraPhyll或其他类似品牌鱼食)每天每笼大约250mg。可以给干的粉末或用水调配成悬浮液：1．0g碎鱼食加入20rnL水混匀，每天每笼喂5mL这样的配制液(使用前摇匀)。幼虫较大时可以适当多给些。按照水质调整喂食量，如果培养介质“混浊”，应减少喂食量。加食应小心调控。加食太少会导致幼虫向水柱迁移，加食太多会导致微生物繁殖快，水中氧气浓度下降。这两种情况都会使摇蚊幼虫生长变慢。当启用新的培养容器时，可以加一些绿藻(如Scenedesm“s5“bspicat“j，ChlDrellnvulgaris)。A．4成虫的喂食一些实验员推荐：将棉花球浸泡于饱和蔗糖溶液后，作为羽化后成虫的食物。A．5羽化在温度20℃土2℃下，摇蚊幼虫在培养箱中大约13d～15d后就开始羽化成虫。A．6虫卵成虫出现后，每周三次检查所有幼虫培养箱中凝胶状虫卵。如出现卵块，应小心取出，转移到盛有 GB／T27859--2011培养液的小盆中。这些卵块将用于建立新的培养容器(每个容器加入2块～4块卵块)或用于毒性试验。一龄摇蚊幼虫在2d～3d后孵化。A．7新建培养箱一旦培养体系建立后，每周就能新建一个培养箱，或根据实验需要新建。当出现成虫后，可以移去老的培养容器。使用这样的培养体系来培养摇蚊成虫最高效。A．8介质“M4”和“M7”的配制Elendt(1990)已描述过介质“M4”。介质“M7”的配制与“M4”一样，只是某些物质的浓度只有“M4”的四分之一，具体见表A．1。由于用以配制贮备溶液的NazSiOs·5HzO、NaNO。、KH。PO；和K。HPO。的浓度不够，试验用溶液不能按照Elendt和Bias(1990)配制。A．9介质“M7”的配制每一个贮备溶液(I)单独配制，混合贮备液(Ⅱ)由这些贮备溶液(I)配制而成(见表A．1)。将50mL混合贮备液(Ⅱ)，及表A．2中所列主要营养元素贮备液若干毫升，用去离子水稀释至lL，这样就配成了介质“M7”。按表A．3将三种维生素加入到去离子水中，配制成维生素贮备溶液。使用前，在最终的“M7”中加0．1mL混合维生素贮备液。(维生素贮备液应小份冷冻贮存)。介质应鼓氧并稳定。表A．1介质M4和M7微量元素贮备液称取下列质量配制混合贮备液(II)：混合下列贮备渡(I)(rag)，用去离子量(mL)的贮备液(I)并用去离试验溶液最终浓度／(mg／L)子水稀释至1L水稀释至iLM4M7M4M7H3803‘571901．00．252．860．715MnCl2·4H2072101．00．250．3610．090LiCp61201．00．250．3060．077RbCl·14201．00．250．0710．018Srcl2·6H20。30401．00．250．1520．038NaBr‘3201．00．250．0160．004Na2MoO‘·2HzO‘12601．00．25O．0630．016CuCl2·2H20‘3351．00．250．0170．004ZnCl22601．00．013CoCk·6HzO2001．0i．00．0100．0lOKI651．00．00330．0033Na2Se0343．8i．0I．00．00220．0022NH。Vo。1I．51．00．000580．00058NazEDTA·2H20‘“500020．05．02．50．625FeS04·7HzOa,b199120．05．0i．00．249‘这些物质在M4和M7中的差异，如上所示。“单独配制这些溶液，然后混合在一起立即高压灭菌处理。 (；BIT27859--2011袭A．2介质M4和M7主要营养元素贮备液称取下列质量(rag)，配制M4和M7介质贮备液主试验溶液M4和IV[7营养元素用去离子水稀释至1L要营养素加入量(mL／L)最终浓度／(rag／L)CaCl2·2H20293801．0293．8MgSOt·7HzO246600o．5123．3KCl580000．15．8NaHC03648001．064．8NaSi03·9HzO500000．210．0NaN0327400．10．274KH2PO‘14300．10．143K2HP0418400．10．184将三种维生素溶液混合，制备成一个维生素贮备液，见表A．3。表A．3介质M4和M7维生素贮备液称取下列质量(rag)，配制M4和M7介质贮备液M4和M7试验溶液维生素用去离子水稀释至1L主要营养素加入量／(mL／L)最终浓度／(mg／L)盐酸硫胺(维生素Bt)7500．10．075维生素B12100．10．0010维生素B77．50．10．00075 B．1沉积物组分附录B(规范性附录)配制沉积物的制备配制沉积物的组分应符合表B．1要求。表B．1配制沉积物的组分要求GB／T27859--2011组成特征沉积物干重百分比／％水苔泥炭，pH尽量接近5．5～6．0，无可见植物残余，泥炭4～5细磨(颗粒尺寸≤1mm)并且风干石英砂粒度：颗粒在50pm～200Mm范围的应>50％75～76高岭石粘土高岭石古量≥30％20有机碳添加泥炭和砂来调整2士0．5碳酸钙粉状CaCO。(化学纯)0．05～0．1水电导率≤10f,S／cm30～50B．2制备泥炭风干后，磨至微细粉末。用高性能均质化装置将置于去离子水中的一定量泥炭粉末制成悬浮液。用CaCO。调整此悬浮液的pH值至5．5±0．5。在20℃±2℃下，温和搅拌此悬浮液，并陈化至少2d，以稳定pH值，并建立稳定的微生物组分。再次测量pH值应在6．0±0．5。然后，将此泥炭悬浮液混入另外的组分(砂和高岭石粘土)和去离子水，获得均匀的沉积物。此沉积物水含量应在沉积物干重的30％～50％范围内。此最终混合物的pH值需再次测定，并控制在6．5～7．5，需要时用CaCO。调节。取沉积物样品，检测干重和有机碳含量。在作摇蚊毒性试验前，建议在与后续试验相同条件下将此配制沉积物陈化7d。B．3贮存用来制备人工沉积物的干组分可以在室温下贮存在干燥阴凉的地方。配制沉积物(湿的)在试验前不能贮存，应在7d陈化结束后立即使用。 CB／T27859--201t附录C(规范性附录)稀释用水的化学特性要求C．1稀释用水的化学特性要求见表C．1。表C．1稀释用水的化学特性要求物质浓度颗粒物<20mg／L总有机碳<2mg／L未离子化的氨<1／Lg／L硬度以碳酸钙计<400mg／L‘残留氯<10pg／L总有机磷农药<50Fg／L总有机氯农药+多氧联苯<50／Lg／L总有机氯<25／19／L‘当硬离子和受试物有相互作用时，应使用低硬度水(这种情况下，不能使用Elendt介质M4)。14 附录D(规范性附录)羽化网罩示意图DI羽化阿罩放置于试验烧杯上，从第20d到试验的最后应放置这些羽化网罩。所使用的羽化周罩示例见图D1。A月龙镕目；B——刨i∞女辩杯，围DI羽化同罩示意图 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